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实验操作

2024-07-06 18:53| 来源: 网络整理| 查看: 265

小鼠作为优秀的实验动物模型,在临床前实验中发挥重要作用,被广泛应用于基础和转化医学研究。在基于小鼠的动物实验中,正确的小鼠注射方法,可以保证小鼠状态,获得可靠实验数据。本文介绍了几种常见的小鼠注射方法。

1、腹腔注射(Intraperitoneal Injections,IP)

小鼠腹腔注射的位置在腹中线两侧0.5cm处。

首先采用背侧保定法抓取小鼠,使其头部稍向后仰,腹部向上,小鼠左后肢用小指固定住。 再用75%酒精棉球消毒注射部位。 将注射器针头刺入皮肤,进入皮下后,沿皮下向前推进2-3mm,针头与皮肤呈45度角刺入小鼠腹腔。 回抽针栓,如无回血或液体即可注入药物。 注射完毕后,轻轻旋转针头,再缓慢拔出注射器,以免液体外漏。

2、尾静脉注射(Intravenous Injections,IV)

小鼠尾部背侧及两侧各有一根静脉,我们一般采用左右两侧的静脉(易于固定)。

将小鼠用专门的保定器保定(注意确保小鼠呼吸通畅),并将尾部拉直,绷紧。 小鼠尾部用酒精棉球反复擦拭或用45-50℃的温水浸泡30秒,从而使血管充盈扩张。 用左手拇指和食指固定住尾部靠近末端约1/3处,食指稍上提、拇指下压使尾部弯曲。 右手持注射器,沿与静脉平行方向,在左手拇指上方的转折处进针。(注意针尖斜面朝上) 针头刺入至少3mm后,轻推针栓,如无阻力或白色皮丘出现,即可注射药物。 拔出针头前,先用干棉球按压止血。如需反复注射,应从尾部末端开始,再逐渐向尾根方向移动。

3、肌肉注射(intramuscular injection,IM)

首先用脱毛膏将小鼠两后肢局部脱毛。

操作时一人保定小鼠,另一人用左手抓住小鼠的一条后肢,右手拿注射器。将注射器与腓肠肌内侧呈垂直角度迅速插入1/4。确定针头插入肌肉后(手指有针尖抵触感),再慢慢推动针栓,推动的速度应避免太快,以免损伤组织。

4、皮下注射(Subcutaneous Injections,SC)

操作时用左手拇指与食指轻轻捏起小鼠背部皮肤,右手持注射器,针头斜面朝上与皮肤呈30-45°角刺入,刺入后把针头轻轻左右摆动(易摆动说明已刺入皮下),再轻轻抽吸,若无回血,则可缓慢地推动针栓以将药物注入皮下。拔出针头后应用干棉球按压针刺部位,防止药物外漏。

5、皮内注射(Intradermal Injections,ID)

固定小鼠后,将注射部位毛发剃去并用75%酒精消毒,左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧,在两指之间针头斜面朝上与皮肤呈大约30°角刺入,同时针头稍微上挑起并稍刺入,再推动针栓将药液注入皮内,最后缓慢抽出针头。注射后皮肤出现一白色小皮丘则表明注射成功。

除以上介绍的常用小鼠注射方法外,还有一些非常用小鼠注射方法,例如:鞘内注射、颞(面)静脉注射、门静脉注射、脑立体定位注射等。

注射法是最常见的给药方式之一,由于操作难度较大且容易引起感染等问题,因此需要专业人员进行操作,并采取相应安全措施。

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