羟氯喹抑制MEK/ERK/ROS通路减少中性粒细胞胞外诱捕网形成改善葡聚糖硫酸钠诱导的小鼠结肠炎

目的：探讨羟氯喹（hydroxychloroquine，HCQ）对葡聚糖硫酸钠（dextran sulfate sodium salt，DSS）诱导的结肠炎模型鼠肠道炎症的影响及其影响中性粒细胞胞外诱捕网（neutrophil extracellular trap，NET）形成的机制。方法：雄性C57BL/6鼠随机分为正常组、DSS组（自由饮用3%DSS溶液+200 μL纯水每天灌胃）、DSS+HCQ组［自由饮用3%DSS溶液+200 μL HCQ（60 mg/kg）每天灌胃］。评估小鼠疾病活动指数（disease activity index，DAI），造模7 d后处死小鼠，分析小鼠结肠长度，肠组织HE 染色评估肠道炎症水平，荧光显微镜及荧光酶标仪检测各组小鼠结肠组织NET水平。收集志愿者外周血提取中性粒细胞进行细胞实验，荧光显微镜及荧光酶标仪检测NET水平，DCFH-DA荧光探针孵育后荧光酶标仪检测活性氧（reactive oxygen species，ROS）水平，蛋白质印迹法检测p-MEK、MEK、p-ERK、ERK蛋白水平。结果：HCQ减轻DSS诱导的小鼠结肠炎并可抑制结肠炎模型鼠肠组织中NET形成。在细胞实验中，HCQ可抑制体外培养中性粒细胞ROS释放和NET形成，同时抑制MEK/ERK信号通路的激活。MEK 激动剂C16-PAF可逆转HCQ对MEK/ERK信号通路的抑制作用，增加 ROS 的释放，并增加 NET 的形成。结论：HCQ 可减轻 DSS 小鼠肠道炎症，机制可能是通过抑制中性粒细胞 MEK/ERK 信号通路，减少ROS释放，从而减轻NET导致的肠道损伤。

Objective：The current study aims to explore the effect and mechanism of hydroxychloroquine（HCQ）on lipopolysaccharide（LPS）induced neutrophil extracelluar traps（NET）in dextran sulfate sodium salt（DSS）induced colitis mice. Methods：Mice were randomly divided into control group，DSS group（3% DSS drinking water+200 μL pure water by gavage），and DSS+HCQ group（3% DSS drinking water+200 μL HCQ of 60 mg/kg by gavage）. The disease activity index（DAI）score was evaluated every day. The mice were killed after seven days，colon length of mice in each group were counted. The pathological changes of colon tissue of mice in each group were observed by HE staining；the NET level was detected by fluorescence microscope and fluorescence microplate reader. The peripheral blood of volunteers was collected to extract neutrophils for experiments in vitro，and the level of NET with fluorescence microscope and fluorescence microplateanalyzer was detected. The level of reactive oxygen species（ROS）was detected by fluorescence microplate analyzer after incubation with DCFH -DA fluorescence probe. The protein expression levels of p-MEK，MEK，p-ERK and ERK were detected by Western blot. Results：HCQ alleviated intestinal inflammation in DSS model mice by reducing the formation of NET in vivo and in vitro. In vitro，HCQ decreased the release of ROS，and inhibited the activation of MEK/ ERK signaling pathway. The MEK agonist C16 - PAF reversed the inhibition of HCQ on MEK/ERK signaling pathway，enhanced the release of ROS，and then increased the formation of NET. Conclusion：HCQ can reduce DSS induced colitis in mice through reducing the release of ROS by inhibiting the MEK/ERK signal pathway，thereby reducing the intestinal damage caused by NET.

溃疡性结肠炎 ； 羟氯喹 ； 中性粒细胞胞外诱捕网 ； 活性氧

ulcerative colitis ； hydroxychloroquine ； neutrophil extracellular traps ； reactive oxygen species

溃疡性结肠炎（ulcerative colitis，UC）是胃肠道慢性非特异性炎症性疾病[1]。近年来，UC的发病率呈逐年上升趋势[2]。目前UC发病机制仍未完全明确，研究提示免疫失调、菌群紊乱、肠屏障破坏、遗传易感性等与UC发病相关[3-5]，肠道免疫失调在UC 的发病中尤为重要[6]。在固有免疫细胞中，中性粒细胞是炎症反应的第一应答者，研究发现活动期UC 患者损伤的肠黏膜中有大量中性粒细胞浸润[7]。

中性粒细胞促进炎症形成的关键机制是中性粒细胞胞外诱捕网（neutrophil extracellular trap，NET）的释放[8-9]。NET是由解聚的染色质及髓过氧化物酶 （myeloperoxidase，MPO）、中性粒细胞弹性蛋白酶 （neutrophil elastase，NE）组成[10]，其诱导多种促炎细胞因子分泌，如肿瘤坏死因子（tumor necrosis factor， TNF）⁃α、白介素（interleukin，IL）⁃1β等，参与自身免疫性疾病的发生。研究发现活动期UC患者肠道组织及外周血中NET水平明显升高，提示NET参与UC炎症的形成[11]，但NET在肠道炎症形成中的机制仍未明确。

研究发现自噬及活性氧（reactive oxygen spe⁃ cies，ROS）参与 NET 形成[12]，ROS 生成是 NET 形成的必要条件[13]，而既往研究表明 MEK/ERK 信号通路激活后可诱导 ROS 的释放[14]。羟氯喹（hydroxy⁃ chloroquine，HCQ）是4⁃氨基喹啉衍生物类药物，具有抗炎、免疫调节作用，其作为自噬抑制剂，可抑制ROS 释放，已被用于包括胰腺癌在内的肿瘤治疗[15-16]。也用于自身免疫性疾病的治疗[17]。既往研究提示，HCQ通过Toll样受体9抑制肝缺血再灌注模型小鼠肝脏组织中NET形成[18]。

前期研究发现HCQ可减低葡聚糖硫酸钠（dex⁃ tran sulfate sodium salt，DSS）诱导的结肠炎，HCQ 能否抑制肠道组织中 NET 形成而减轻 UC 肠道炎症，仍不清楚。本研究构建 UC 肠炎模型，通过动物和细胞实验探讨HCQ是否可以通过抑制 NET形成减轻结肠炎症及其机制。

本研究纳入健康体检者，排除胃肠道疾病，无高血压、冠心病、糖尿病及自身免疫性疾病等，健康志愿者10例，采集3 mL外周血，分离中性粒细胞。本研究经南京医科大学第一附属医院伦理委员会审批通过（伦理号2021SR192），所有参与者已签署知情同意书。

本研究使用清洁级雄性C57BL/6鼠，购自北京维通利华实验动物技术有限公司，在南京医科大学实验动物基地饲养。研究经南京医科大学实验动物福利伦理委员会批准（批文编号：IACUC ⁃ 2106043）。MEK、p ⁃MEK、ERK、p ⁃ERK 抗体（Cell Signaling Technology公司，美国），ECL 显影液（Ther⁃ mo Fisher 公司，美国），ROS 检测试剂盒（上海碧云天科技公司），Sytox Green 染色液、Hoechst33342 染色液（Thermo Fisher 公司，美国），4%多聚甲醛（武汉赛维尔生物公司）。

雄性 C57BL/6 小鼠（6~8 周龄，体重 18~22 g），SPF 环境中适应 1 周后随机分 3 组：对照组（n=6）、DSS 组（n=6）、DSS+HCQ 组（n=6）。对照组：全程自由饮水，每天给予1次200 μL纯水灌胃；DSS模型组：自由饮用3%DSS溶液，同时每天给予1次200 μL纯水灌胃；DSS+HCQ 处理组：自由饮用 3%DSS 溶液，同时每天给予1次200 μL HCQ（60 mg/kg）灌胃。

每日观察小鼠精神状态，记录各组小鼠体重，记录粪便性状并进行隐血试验，根据表1 进行 DAI 评分[19]。造模结束后颈椎脱臼法处死小鼠，留取肠组织标本，固定、包埋、切片、HE 染色、显微镜下观察结肠黏膜损伤结构及炎症细胞浸润，根据表2进行组织病理评分。

石蜡切片经脱蜡、水化、抗原修复后，滴加10% 山羊血清37℃下孵育1 h；滴加瓜氨酸化组蛋白H3（citrullinated histone H3，citH3）和中性粒细胞弹性蛋白酶（neutrophil elastase，NE）一抗工作液（1∶100）4℃过夜孵育；第2天使用1×PBS润洗切片3次，每次5 min；滴加免疫荧光二抗（Anti⁃Rabbit lgG⁃Alexa Fluor488、Anti⁃Mouse lgG⁃Alexa Fluor594，1∶200）工作液；37℃孵育1 h；滴加DAPI，室温下孵育15 min；滤纸吸去切片表面液体，滴加荧光抗淬灭剂，荧光显微镜下观察。

表1 DAI评分

Table1 Score of DAI

表2 组织病理评分

Table2 Score of histopatology

EDTA 抗凝管收集健康志愿者外周血 3 mL，将外周血加入含5 mL中性粒细胞分离液的离心管后离心，吸取多核细胞以及分离液，转移至另一个15 mL 离心管，加入PBS，400 r/min 离心10 min 收集细胞； 弃上清，加 2 mL 红细胞裂解液，3 min 后加 PBS， 340 r/min 离心 8 min；弃上清、用含有 10% FBS 的 RPMI1640培养基重悬细胞。

将中性粒细胞以 2×104 个/孔的密度铺至 96 孔板中，培养体积为 100 μL。将细胞分为 3 组：对照组、LPS 组、LPS+HCQ 组。在 LPS 刺激前，先加入 HCQ预处理1 h；每孔加入1 μL浓度为20 μmol/L的 Sytox Green 以及 1 μL 浓度为 1 mg/mL 的 Hoechst 33342。培养箱中培养3 h、使用荧光酶标仪（通道为 350 nm/461 nm 以及 488 nm/525 nm）定量分析，以 Sytox Green 荧光强度/Hoechst 33342 荧光强度计算出的比值进行比较。

96 孔板中每孔加入 50 μL 多聚赖氨酸溶液 （0.1 mg/mL）包被。细胞分为3组：对照组、LPS刺激组、LPS+HCQ处理组；LPS刺激前，加入HCQ预处理 1 h；每孔加入1 μL浓度为20 μmol/L的Sytox Green以及1 μL浓度为1 mg/mL的Hoechst 33342，充分混匀、 培养箱中培养3 h、每孔加入33.3 μL 4%多聚甲醛、 4℃过夜，使用细胞成像仪检测。

将中性粒细胞浓度调整至1×106 个/mL，每1 mL 溶液加入0.5 μL 2，7⁃二氯荧光素二乙酸酯（2，7⁃di⁃ chlorodihydrofluorescein diacetate，DCFH⁃DA），37℃ 孵育15 min；孵育结束后使用PBS清洗2次，调整细胞浓度为2×105 个/mL，铺至96孔板，每孔100 μL，分别加入药物处理；使用荧光酶标仪测定荧光强度（通道为488 nm/525 nm），每隔10 min测量1次。

配置10% SDS⁃PAGE凝胶，100 V恒压电泳。裁剪PVDF膜，在甲醇溶液中浸泡30 s激活，倒入预冷的转膜液，冰上 250 mA 恒流转膜 1 h；将膜置于 TBST 溶液中漂洗5 min、转移至5%脱脂牛奶封闭液中、室温下摇床孵育1 h；加入一抗（浓度1∶1 000）4℃ 过夜孵育；TBST 中漂洗 3 次，每次 10 min；将条带置于二抗中（浓度1∶10 000），室温下缓慢摇动孵育 2 h；TBST漂洗3次，每次10 min；将显影液均匀淋于条带上，使用天能凝胶成像系统进行显影。

本研究数据采用 SPSS 22.0 以及 GraphPad Prism 9 进行分析。符合正态分布的数据资料以均数±标准差（x- ± s）表示，两组连续性变量数据比较采用独立样本t检验，3组及3组以上连续性变量的比较采用单因素方差分析（One⁃way ANOVA），其中两两比较采用LSD法。P