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基于磁珠法从植物叶片中提取基因组dna的试剂盒及其提取方法

2024-06-28 18:33| 来源: 网络整理| 查看: 265

专利名称:基于磁珠法从植物叶片中提取基因组dna的试剂盒及其提取方法 技术领域:本发明属于分子生物学技术领域,尤其涉及基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒及其提取方法。 背景技术:随着分子生物学和生物医学的不断发展,基因组DNA成为了一个重要的研究课题,基因组DNA对生物的生长、遗传、变异等生命过程起着控制作用。对基因组DNA的研究,首先涉及到基因组DNA的提取。对于植物来说,提取基因组DNA的主要步骤是破壁、破膜、去除杂质、漂洗和洗脱。首先,在提取的过程当中使用SDS或者CTAB等去污试剂可以破坏细胞膜,使细胞内的蛋白质沉淀下来,从而将细胞内的基因组DNA释放;其次,利用高盐沉淀的方法或者氯仿酚抽提的方法去除蛋白质、多酚和多糖等杂质;然后,在提取的上清中加入适量体积的乙醇、异丙醇和PEG等溶剂,使得基因组DNA吸附在硅胶柱、硅胶磁珠和玻璃珠离子交换柱等介质上;再加入漂洗液进行漂洗,最后是加入洗脱液将基因组DNA从介质上洗脱下来。目前,市面上核酸纯化普遍使用的吸附介质是硅胶柱,硅胶柱采取的固体介质为纤维状的硅胶膜,主要成分都是二氧化硅。基本原理为核酸在高盐,低温,低PH或者合适浓度的乙醇和异丙醇的情况下(不能低于4. 0)能够选择性地与硅胶柱或者磁珠结合,而在高温,低盐,高PH的情况下,能够从硅胶柱上或者磁珠被洗脱下来。大部分情况下,核酸与硅胶柱的结合需要加入一定量的乙醇或者异丙醇,片段越小,加入的量越大,吸附率不高。植物基因组DNA的提取方法一般有CTAB法、SDS法和高盐法。CTAB法有很好的去污效果,因为CTAB是一种去污剂,在加热的情况下,能有效的裂解植物细胞,同时CTAB还可以和糖类进行结合,并通过离心作用将多糖去除。CTAB法也被应用于多种植物基因组DNA的提取,但是目前通用的CTAB法试剂盒使用起来操作繁琐,而且,一般会与氯仿酚等有毒的有机溶液配合使用。SDS法是基因组DNA提取的传统方法,不但用于植物基因组DNA的提取,也用于其他组织DNA的提取,比如细胞,动物组织,血液。SDS是一种阴离子表面活性剂,在加热的情况下,可以裂解研磨过后的植物细胞,并且SDS还可以与K离子反应,产生白色絮状物质,这种物质可以与蛋白结合,通过离心一起沉淀。但是SDS法也有一定的缺陷,在裂解和离开的过程当中消耗的时间较长。提供一种现有技术中的植物基因组DNA的提取方法-CTAB法,其包括如下步骤步骤I、取新鲜植物叶片(不超过IOOmg)或者干燥组织(不超过50mg),放于研钵,加入液氮研磨充分; 步骤2、研磨后材料全部转移到2mL离心管,加入,加入500 u LCTAB裂解液(IOOmmoI/L Tris-HCl, pH8. 0 ;50mmol/L EDTA, pH8. 0 ;1. Omol/L NaCl ;2 % CTAB ;2 %PVP40)和20 L P -巯基乙醇,瞬时涡旋后置于60°C水浴锅中,水浴30min (干燥组织可酌情延长时间);步骤3、加入600 i! L氯仿/异戊醇(24 : I),漩涡振荡混匀,并在12,OOOrpm下离心 IOmin ;步骤4、小心吸取300 u L上清至一新的2mL离心管中,避免吸起沉淀,加入混合液300 u L无水乙醇和20 ii L磁珠溶液,充分涡旋混匀;步骤5、室温静置5min,离心管上磁力架,静置Imin ;步骤6、吸去上清,加入70%乙醇,离心管下磁力架,充分涡旋混匀,静置lmin,离心管上磁力架; 步骤7、重复操作步骤6 —次;步骤8、离心管置于磁力架上风干IOmin ;步骤9、加入100-150ii L预热(65°C )洗脱液。离心管下磁力架,充分涡旋混匀,在65 °C水中进行水浴5min ;步骤10、离心管置于磁力架上,静置2min ;步骤11、小心将上清吸出,备用。该技术方案仍然存在一些缺点I、通用性不强。对于提取水稻,小麦等普通植物的基因组DNA效果良好,但是对于提取棉花,葡萄,黑加仑这些多糖、多酚、单宁、脂质等次生代谢物含量丰富的植物叶片组织的基因组DNA的时候,其纯化成功率较低,无法彻底去除多酚,多酚类物质。多酚在提取的过程中会有氧化而产生褐变,多糖等物质与基因组DNA结合后会产生粘稠的胶状物,这2种情况都容易造成基因组DNA降解,导致提取的基因组DNA纯度不高。2、裂解液在裂解研磨后的叶片组织,需要在60°C水浴加热30min,同时需要离心时间IOmin,这些步骤消耗的时间过多。3、提取棉花等次生代谢物含量丰富的植物叶片组织的基因组DNA时,需要加入有害的有机溶剂氯仿等,对于操作人员的健康不利,同时产生的废液也会造成污染。

发明内容 本发明的目的是要提供一种可以适用于棉花,葡萄,黑加仑等植物的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒及其提取方法。根据本发明的一个方面,提供的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒,其包括预处理溶液,快速裂解液,DNA结合液、磁珠悬浮液和洗脱液,预处理溶液0. 05M 0. 2M Tris-HcUO. 01 0. 05M EDTA (乙二胺四乙酸)、体积比为I % 3 %的巯基乙醇、质量/体积比为0. 5 % 2 %的PVP (聚乙烯吡咯烷酮),快速裂解液50 100mmol/L KAC(醋酸钾),PH = 5. 2、10 50mmol/LEDTA(乙二胺四乙酸)、4 6M GHCL(盐酸狐)、5 25mM sodium citrate (朽1樣酸纳)、I 5%Tween 20 (聚氧乙烯去水山梨醇单月桂酸酯),DNA结合液质量/体积比为5 % 10 %的PEGS000(聚乙二醇8000)、1. 5-4MGITC (异硫氰酸胍),0. 5-1M NaCl,磁珠悬浮液磁珠溶于超纯水中,其中磁珠的浓度为50-100mg/mL,洗脱液1 IOmM Tris-HCl、l-2mM EDTA (乙二胺四乙酸),pH = 8.0。 其有益效果是,预处理溶液可以有效的破解细胞壁和细胞膜,但是不能破坏细胞核,由于基因组DNA位于细胞核内,而多糖、多酚、单宁等则存在于细胞质中,由于多糖、多酚、单宁会溶于预处理溶液内,所以通过预处理溶液可以有效的去除多糖、多酚、单宁等杂质对于基因组DNA提取的干扰裂解液以盐酸胍和Tween 20为主要成分,常温条件下能够在2min内充分裂解植物细胞,并且后续的离心步骤只要2min即可,大大节约了操作时间。盐酸胍为强变性剂,其裂解细胞的效果远好于CTAB和SDS。采用2倍体积的5% PEG, 4M GITC和0. 5M NaCl溶液代替无水乙醇作为DNA结合 液,效果更好,得率更高。而且,本发明采用的技术方案当中,不需要加入有机溶剂氯仿等,不会对操作人员 产生危害,安全可靠。在一些实施方式中,磁珠的颗粒直径为100-200nm,磁珠表面包被娃轻基。其有益效果是,通过磁珠对基因组DNA产生吸附作用,从而实现对基因组DNA的提取操作,由于纳米级别的磁珠外表面为一层二氧化硅,由于磁珠颗粒小,比表面积大,磁珠法的得率一般都要高于硅胶柱式法,更为重要的是,磁珠方更容易实行自动化和高通量。根据本发明的另一方面,提供的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒的提取方法,其包括步骤一、取植物叶片放于研钵内研磨充分,研磨时间为l_2min ;步骤二、若所取植物叶片为棉花,黑加仑,草莓,葡萄等多糖、多酚、单宁、脂质含量丰富类的植物叶片,加入500 u L预处理液,若所取植物为水稻,小麦或者玉米类简单植物叶片,则直接进入步骤三;步骤三、加入500 U L快速裂解液;步骤四、在8,000-12, OOOrpm 下离心 l_3min ;步骤五、小心吸取400 U L上清至一新的2mL离心管中,避免吸起沉淀,加入混合液400-1000 u L DNA结合液和10-50 u L磁珠悬浮液,充分涡旋混匀;步骤六、在18-25°C下静置5-10min后,将离心管置于磁力架上,静置l_3min ;步骤七、吸去上清,加入体积比为70%的乙醇,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混匀后静置l_3min,再将离心管置于磁力架上;步骤八、将离心管置于磁力架上风干5_15min ;步骤九、加入100-150 ii L预热65°C的DNA结合液,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混匀,并在55-80°C水中水浴2-8min ;步骤十、将离心管置于磁力架上,静置l_2min ;步骤^^一、小心将上清吸出,备用。其有益效果是,本发明的提取方法尤其适用于棉花,葡萄,黑加仑这些多糖、多酚、单宁、脂质等次生代谢物含量丰富的植物叶片组织的基因组DNA提取。在一些实施方式中,在步骤一中,若所取植物叶片为新鲜植物叶,则取量不超过lOOmg,若所取植物叶片为干燥组织,则取量不超过50mg,。其有益效果是,因为新鲜植物叶中含水份较多,所以取量稍大些,而干燥组织的含水量较少,所以取量可以稍小些。在一些实施方式中,在步骤一中,在研钵内加入液氮后再进行研磨。其有益效果是,利用液氮创造一个低温环境,一方面,低温可以抑制核酸酶的活性,使得基因组DNA免受核酸酶的侵袭,另一方面,低温可以使物体的脆性增强,从而更便于研磨,而且研磨时也更省力。在一些实施方式中,在步骤七与步骤八之间还包括一步骤,吸去上清,加入体积比为70%乙醇,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混匀后静置l_3min,再将离心管置于磁力架上。其有益效果是,通过两次同样的重复操作,使得提取的基因组DNA的纯度更加的闻。

图I是本发明的试剂盒及其提取方法提取的基因组DNA的琼脂糖电泳对比图;其中M道为标记泳道,1,2泳道为实验1-1中CTAB方法提取的棉花新鲜嫩叶基因组DNA条带,3,4泳道为实验1-1中采用本发明提取的棉花新鲜嫩叶基因组DNA条带,5,6泳道为实验1-2中CTAB方法提取的棉花老叶基因组DNA条带,7,8泳道为实验1_2中采用本发明提取的棉花老叶基因组DNA条带。图2是本发明的试剂盒及其提取方法提取的基因组DNA的又一琼脂糖电泳对比图;其中,1,2泳道为实验2中采用CTAB方法提取的水稻叶片基因组DNA条带;3,4泳道为实验2中采用本发明提取的水稻叶片基因组DNA条带。 具体实施例方式下面结合具体的实施例来进一步的阐述本发明,应当理解,这些实施例仅用于解释说明本发明,可以有不同形式的等效替换,本实施例不能限制本发明的保护范围。I、试剂盒一种基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒,其包括预处理溶液,快速裂解液,DNA结合液、磁珠悬浮液和洗脱液,预处理溶液包括0. 2M tris-HCL、0. 05M EDTA、体积比为2%的巯基乙醇和质量/体积比为2%的PVP,快速裂解液包括100mmol/LKAC, PH = 5. 2、50mmol/L EDTA、6MGHCl、5mM sodiumcitrate^2% Tween 20,DNA 结合液包括5% PEG8000、4M GITC,0. 5M NaCl,磁珠悬浮液包括磁珠溶于超纯水中,其中磁珠的浓度为50mg/mL,磁珠的颗粒直径为100-200nm,磁珠表面包被硅羟基,洗脱液包括5mMTris-HClUM EDTA, pH = 8. O其中tris-HCL采用加拿大生物技术公司(BBI)的BB0079,EDTA采用美国西格玛公司(Sigma)的E6758,PVP采用加拿大生物技术公司(BBI)的#PB0436,KAC采用加拿大生物技术公司(BBI)的PB0438,GHCL采用美国西格玛公司(Sigma)的#G3272,sodiumcitrate采用美国西格玛公司(Sigma)的#C8532, Tween 20采用美国西格玛公司(Sigma)的# 9416沖£68000采用加拿大生物技术公司(BBI)的#PB0433,GITC采用美国西格玛公司(Sigma)的#69277,似(1采用加拿大生物技术公司(BBI)的ST1218。2、基因组DNA提取方法采用该试剂盒从植物当中提取基因组DNA的方法,其步骤包括步骤一、取植物叶片放于研钵内,并加入液氮研磨充分,研磨时间为2min ; 步骤二、若所取植物叶片为棉花,黑加仑,草莓,葡萄等多糖、多酚、单宁、脂质含量丰富类的植物叶片,加入500 U L预处理液,若所取植物为水稻,小麦或者玉米类简单植物叶片,则直接进入步骤三; 步骤三、加入500 U L快速裂解液;步骤四、在12,OOOrpm下离心2min ;步骤五、小心吸取400 u L上清至一新的2mL离心管中,在吸取的时候避免吸起沉淀,加入混合液800 u L DNA结合液和20 ii L磁珠悬浮液,充分涡旋混匀;步骤六、在20°C下静置5min后,将离心管置于磁力架上,静置Imin ;步骤七、吸去上清,加入70%乙醇,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混匀后静置lmin,再将离心管置于磁力架上;步骤八、重复步骤七的全部操作一次步骤九、将离心管置于磁力架上风干IOmin ;步骤十、加入150 预热65°C的DNA洗脱液,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混匀,并在65 °C水中水浴5min ;步骤^^一、将离心管置于磁力架上,静置2min ;步骤十二、小心将上清吸出,备用。3、结果对比分析将本发明技术方案的实验结果与现有技术的CTAB方法的实验结果进行对比分析。实验1-1选用IOOmg棉花新鲜嫩叶进行基因组DNA的提取。同时采用本发明的提取方法与现有技术的CTAB方法同时进行。最后均用150 ii L洗脱液实验结果的数据对比如表所示 权利要求 1.基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒,其包括预处理溶液,快速裂解液,DNA结合液、磁珠悬浮液和洗脱液,预处理溶液0. 05M 0. 2M Tris-Hcl、0. 01 0. 05M EDTA (乙二胺四乙酸)、I % 3%巯基乙醇、0. 5% 2% PVP(聚乙烯吡咯烷酮), 快速裂解液50 100mmol/L KAC (醋酸钾),PH = 5. 2、10 50mmol/LEDTA (乙二胺四乙酸)、4 6M GHCL (盐酸狐)、5 25mM sodium citrate (朽1 樣酸纳)、I 5% Tween20 (聚氧乙烯去水山梨醇单月桂酸酯), DNA 结合液5% 10%PEG8000(聚乙二醇 8000)、1. 5-4M GITC (异硫氰酸胍),0. 5-1MNaCl, 磁珠悬浮液磁珠溶于超纯水中,其中磁珠的浓度为50-100mg/mL, 洗脱液1 IOmM Tris-HCl、l-2mM EDTA(乙二胺四乙酸),pH = 8. O。 2.根据权利要求I所述的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒,其中,磁珠的颗粒直径为100-200nm,磁珠表面包被硅羟基。 3.权利要求I或2所述的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒的提取方法,其包括 步骤一、取植物叶片放于研钵内研磨充分,研磨时间为l_2min ; 步骤二、若所取植物叶片为多糖、多酚、单宁、脂质含量丰富类的植物叶片,加入500 u L预处理液,若所取植物为水稻,小麦或者玉米类简单植物叶片,则直接进入步骤三; 步骤三、加入500 u L快速裂解液; 步骤四、在 8, 000-12, OOOrpm 下离心 l_3min ; 步骤五、小心吸取400 u L上清至一新的2mL离心管中,避免吸起沉淀,加入混合液400-1000 u L DNA结合液和10-50 u L磁珠悬浮液,充分涡旋混匀; 步骤六、在18-25°C下静置5-10min后,将离心管置于磁力架上,静置l_3min ; 步骤七、吸去上清,加入体积比为70%的乙醇,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混勻后静置l-3min,再将尚心管置于磁力架上; 步骤八、将离心管置于磁力架上风干5-15min ; 步骤九、加入100-150 ii L预热65°C的DNA结合液,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混匀,并在55-80°C水中水浴2-8min ; 步骤十、将离心管置于磁力架上,静置l_2min ; 步骤十一、小心将上清吸出,备用。 4.根据权利要求3所述的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的提取方法,其中步骤一中, 若所取植物叶片为新鲜植物叶,则取量不超过lOOmg, 若所取植物叶片为干燥组织,则取量不超过50mg。 5.根据权利要求4所述的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的提取方法,其中,步骤一中,在研钵内加入液氮后再进行研磨。 6.根据权利要求3或4或5所述的基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的提取方法,其中,步骤七与步骤八之间还包括一步骤,吸去上清,加入体积比为70%的乙醇,将离心管从磁力架上取下,充分涡旋混匀后静置l_3min,再将离心管置于磁力架上。 全文摘要 本发明属于分子生物学技术领域,尤其涉及基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒及其提取方法,基于磁珠法从植物叶片中提取基因组DNA的试剂盒,其包括预处理溶液,快速裂解液,DNA结合液、磁珠悬浮液和洗脱液,通过预处理溶液可以有效的破解细胞壁和细胞膜,通过预处理溶液可以有效的去除多糖、多酚、单宁等杂质对于基因组DNA提取的干扰。快速裂解液以盐酸胍和Tween 20为主要成分,常温条件下能够在2min内充分裂解植物细胞,并且后续的离心步骤只要2min即可,大大节约了操作时间。盐酸胍为强变性剂,其裂解细胞的效果好,而且,本发明中不需要加入有机溶剂氯仿等,不会对操作人员产生危害,安全可靠。 文档编号C12N15/10GK102618532SQ20121013132 公开日2012年8月1日 申请日期2012年5月2日 优先权日2012年5月2日 发明者李宗飞 申请人:姬云, 易春, 李凯, 李宗飞



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