官方公布：非洲猪瘟病毒核酸检测方法

猪血清每批血清取至少2个最小包装的样品，等量混合，取混合液进行核酸提取。

猪胰酶干粉状胰酶，取至少2份样品，根据使用情况分别配制成不低于2.5%浓度的溶液，等量混合，取混合液进行核酸提取；液体胰酶，取至少2个最小包装的样品，等量混合，取混合液进行核酸提取。

其他猪源衍生物固体、液体或干粉状猪源衍生物，可分别按组织、血清或干粉状胰酶的方法进行取样和样品处理。

三

核酸提取

1 试剂和器材

（1） 试剂 根据核酸提取方法确定，如氯仿、异丙醇、无水乙醇、0.1 mol/l 柠檬酸钠（含10%乙醇）、75%乙醇等。

（2） 仪器 核酸含量测定仪；常温台式离心机；旋涡振荡器；水浴锅；微量移液器1套（最大量程分别为10 µl、100 µl、200 µl、1000 µl）。

（3） 耗材1.5 ml带盖离心管、无菌吸头（0～10 µl、0～200 µl、100～1000 µl）、一次性乳胶手套。

2 操作程序（TRIZOL法），也可以选择其他等效核酸提取方法提取样品中的DNA。

（1） 取样品250 µl，加入750 µl Trizol，颠倒混匀，室温放置5分钟。

（2） 加入200 µl氯仿，充分混匀，室温放置10 分钟，4℃下以12000 g离心15 分钟。

（3） 弃去上清液，加入220 µl无水乙醇，颠倒混合，15～30℃放置2～3分钟，2～8℃以2000 g离心5分钟，沉淀物为DNA。

（4） 弃去上清液，加入含10%乙醇的0.1 mol/l 柠檬酸钠750 µl洗涤DNA，15～30℃放置30分钟，2～8℃以2000 g离心5分钟。重复一次。

（5） 加入75%乙醇1.2 ml，重悬DNA沉淀，15～30℃放置20分钟，4℃2000 g离心5分钟。可重复一次，充分洗涤DNA沉淀。

（6） 弃去上清液，敞开离心管管口，在空气中干燥5～10分钟，加入30～50 μl的无核酸酶灭菌水溶解DNA，－20℃以下保存备用。

3 注意事项

（1）核酸提取试剂具有腐蚀和强变性能力，应做好个人防护，佩戴手套、口罩和护目镜，防止液体飞溅到皮肤和眼睛。

（2）后续的核酸检测敏感性很高，要防止样品之间相互污染，最好使用带滤芯的枪头，且每次吸取取液体时均需更换枪头。

（3）为防止核苷酸降解，应避免核酸酶污染，使用的耗材均需无核酸酶。

（4）做好剩余样品的无害化处理及操作台面的消毒处理。剩余样品可通过高压灭菌或煮沸处理，也可放在1%卫可或2%氢氧化钠消毒液中浸泡处理，操作台面使用1%卫可擦拭。

（5）提取后的DNA样品要用锡箔纸封存，取样时应用枪头直接刺破锡箔纸取样，防止污染。

四

检测

下列两种方法可任选其一。

1实时荧光定量PCR检测法

（1）试剂

荧光定量PCR试剂 本操作中以Applied Biosystems TaqMan Gene Expression Assays kit为例，也可选用其他荧光定量PCR试剂。

（2）扩增引物及探针

扩增引物：

ASF-05-Zsak-1466F（10 µmol/ L）：5'-CCTCGGCGAGCGCTTTATCAC-3'

ASF-05-Zsak-1528R（10 µmol/ L）：5'-GGAAACTCATTCACCAAATCCTT-3'

探针ASF-05-Zsak-1486prob (10 µmol/ L)：5'-FAM-CGATGCAAGCTTTAT-MGB-3'

无核酸酶的灭菌水PCR级别。

（3）仪器荧光定量PCR仪；微量移液器1套（最大量程分别为10 µl、100 µl、200 µl、1000 µl）。

耗材1.5 ml带盖离心管、0.2 ml薄壁PCR管、荧光定量PCR 96孔板、0.1 ml荧光PCR八连管、无菌吸头（0～10 µl、0～200 µl、100～1000 µl）、一次性乳胶手套。

（4）操作程序

样品DNA制备 按照前述方法进行核酸提取。

反应体系的配制 配制比样品数量至少多4个的反应体系，同时设置强阳性、弱阳性和阴性对照。在强阳性和弱阳性对照反应管中分别加入含有非洲猪瘟P72基因的标准质粒DNA各3 µl，在阴性对照反应管中加入3µl无核酸酶灭菌水。每个PCR反应管中应包含以下成分：

反应程序 将所有待检样品和强阳性、弱阳性、阴性对照反应管放在荧光定量PCR仪中，按照以下程序进行扩增：50℃2分钟，95℃5分钟，95℃15秒，58℃退火延伸1分钟，45个循环（荧光信号收集在此阶段每次循环的退火延伸时进行）。

（5）结果判定

阈值设定 试验操作结束后，确定Ct 值为每个样品反应管内荧光信号到达设定阈值时所经历的循环数。

阈值设定原则：根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过阴性对照扩增曲线的最高点为准。

质控标准对照组的检测结果应符合以下情况，此次检测方为有效：阴性对照无Ct 值，且无扩增曲线。

强阳性对照的Ct 值应在18～22之间，并出现典型的扩增曲线。

弱阳性对照的Ct 值应在33～35之间，并出现典型的扩增曲线。

（6）判定

阴性：无Ct值，且未出现扩增曲线，判定为样品中无ASFV核酸。

阳性：Ct值≤40，且出现典型的扩增曲线，判定为样品中存在ASFV核酸。

可疑：Ct值>40，且出现典型扩增曲线，判定为可疑，应重检。重检后，Ct值≤40且出现典型扩增曲线者判为阳性，其他情况均判定为阴性。

2 普通 PCR检测法

（1）试剂

PCR试剂10×PCR缓冲液（含25 mmol/l Mg2+），DNA扩增酶，dNTP预混液。

（2）扩增引物

primer PPA-1（10 μmol/L）：5'-AGTTATGGGAAACCCGACCC-3' (上游引物)；

primer PPA-2（10 μmol/L）：5'- CCCTGAATCGGAGCATCCT-3' (下游引物)。

DNA分子量标准品DL500。

TAE电泳缓冲液配制方法见《电泳液标准配制流程》。

1%琼脂糖凝胶板在100 ml 1×TAE缓冲液中加入1g琼脂糖，加热融化，加入5.0 μl (10 mg/ml)溴化乙锭，混匀，倒入水平放置的凝胶盘中，胶板厚度达5.0 mm左右。根据样品数量选用适宜的梳子。待凝胶冷却凝固后拔出梳子(胶中形成加样孔)，放入电泳槽中，加1×TAE缓冲液淹没胶面。

（3）仪器DNA扩增仪，稳压稳流电泳仪，水平电泳槽，凝胶成相系统（或紫外透射仪），微量移液器1套。

耗材1.5 ml带盖离心管、0.2 ml薄壁PCR管、无菌吸头（0～10 µl、0～200 µl、100～1000 µl）。

（4）操作程序

样品DNA制备按照前述方法进行核酸提取。

反应体系的配制配制比样品数量至少多3个的反应体系，同时设立阳性和阴性对照。在阳性对照反应管中加入非洲猪瘟P72基因重组质粒2.0 µl，在阴性对照反应管中加入2.0 µl无核酸酶灭菌水。每个PCR反应管中应包含以下成分：

反应程序将所有待检样品及阳性和阴性对照反应管放在PCR仪中，按照以下程序进行扩增：94℃2分钟，94℃30秒，60℃30秒，72℃30秒，35个循环；72℃10分钟。4℃保存。

PCR扩增产物分析取PCR扩增产物10 µl，加6×加样缓冲液2.0 µl，混匀，用1.5%琼脂糖凝胶对混合物进行电泳分析，电压120V，电流50 mA，电泳时间30分钟。电泳结束后，用凝胶成像系统拍照，记录检测结果。

（5）结果判定

质控标准

对照组的检测结果应符合以下情况，此次检测方为有效：

阴性对照应不出现257bp的特异性条带。

阳性对照应出现257bp的特异性条带。

（6）判定

阳性：待检样品出现与阳性对照大小一致的扩增条带，判定为非洲猪瘟病毒核酸阳性，扩增产物可通过DNA测序进一步确定基因型。

阴性：待检样品未出现与阳性对照大小一致的扩增条带，判定为非洲猪瘟病毒核酸阴性。

3、 注意事项

（1）检测过程中应遵循PCR实验分区原则，即应区分试剂配制区、样本处理区、核酸扩增区。

（2）应避免在含有靶序列的区域中使用引物，防止污染靶序列。返回搜狐，查看更多