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第三章 巢式PCR
第一节 常规巢式PCR
一、引言
PCR技术的出现给研究样品中的微量基因提供了一个强大的武器,但在某些情况下,对于许多靶序列来说,用一对引物扩增的产物仍不足以通过凝胶检测观察到,在这种情况下,就需要用到巢式PCR(nested PCR)技术了[1]。 二、原理巢式PCR是一种PCR改良模式,利用两套引物对,包含两轮PCR扩增,首先对靶DNA进行第一步扩增,然后从第一次反应产物中取出少量作为反应模板进行第二次扩增,第二次PCR引物与第一次反应产物的序列互补(见图3-1),第二次PCR扩增的产物即为目的产物。 ![]() 图3-1 巢式PCR原理示意图 使用巢式引物进行连续多轮扩增可以提高特异性和灵敏度。第一轮是15~30个循环的标准扩增,将一小部分起始扩增产物稀释100~1000倍(或不稀释)加入第二轮扩增中进行15~30个循环。或者,也可以通过凝胶纯化对起始扩增产物的大小进行选择。两套引物的使用降低了扩增多个靶位点的可能性,因为同两套引物都互补的靶序列很少,而使用同样的引物对进行总数相同的循环(30~40)会扩增非特异性靶位点。巢式PCR可以增加有限量靶序列(如稀有mRNA)的灵敏度,并且提高了一些有难度的PCR(如5' RACE)的特异性。 三、材料① 模板:基因组DNA或cDNA。 ② dNTP混合液:每种脱氧核糖核苷酸的浓度为2.5mmol/L。 ③ 四条特异引物:两条外引物,两条内引物,浓度均为10μmol/L。 ④ Taq DNA聚合酶及其10×PCR缓冲液。 ⑤ 高压灭菌去离子水。 ⑥ PCR扩增仪。 ⑦ 用于琼脂糖凝胶电泳的试剂。 四、方法 1.引物设计巢式PCR的引物设计原则与常规PCR相同。通常内引物与外引物间隔多长距离也没有统一的要求,具体情况根据每个实验而定。 2.模板一般使用经过提取的基因组DNA或合成的cDNA。 3.操作方法① 设立50μL的PCR反应体系,在0.25mL的PCR管中,分别加入: ![]() 如果PCR仪没有热盖,在反应液上加一滴矿物油(约50μL)。将PCR试管放入PCR仪中。 ② 设置PCR反应条件: ![]() PCR反应中的温度要根据具体反应而定,一般来说每分钟合成1000bp左右。 ③ 进行第二轮PCR反应,在0.25mL的PCR管中,分别加入: ![]() PCR反应条件同第一轮。 ④ PCR产物的检测 反应结束后,用10μL第二轮PCR反应液进行琼脂糖凝胶电泳分析。 五、注意事项注意事项同常规PCR。 六、应用与小结巢式PCR所需条件与常规PCR相同,但与常规PCR相比,通过连续多轮扩增进一步提高了反应的特异性与灵敏性。对于在分子生物学研究与医学检测中,利用常规PCR方案难以扩增出的样品,可以尝试使用巢式PCR进行扩增与检测。 巢式PCR大多应用在当模板DNA含量较低时,用一次PCR难以得到满意的结果,这时用巢式PCR的两轮扩增可以得到很好的效果。范金水等分别用常规PCR和巢式PCR检测我国8个城市184例肝炎病人,其阳性率分别为9.1%~23.5%和31.8%~62.5%,说明巢式PCR的敏感性要高于常规PCR[2]。程保平等比较了三种PCR方法的柑橘黄龙病菌检测效果,发现巢式PCR法兼具常规PCR的优点(低成本、大规模)和实时荧光定量PCR的优点(检测灵敏度高),但是操作较复杂,适合技术熟练的研究者使用[3]。 在临床检测中,还会用到单管巢式PCR方法,单管巢式PCR是在传统巢式PCR的基础上将两对PCR引物作特殊的设计,巢式外侧两个引物为25bp,退火温度比较高(68℃),巢式内侧两个引物为17bp,退火温度较低(46℃),PCR反应液的其他成分与一般PCR相同。这样,通过控制退火温度(68℃)使外侧引物先行扩增,经过20~30次循环后(第一次PCR),再降低退火温度(46℃)使内侧引物以第一次PCR产物为模板进行巢式扩增。该PCR的灵敏度可达到每毫升样品检出0.3个淋球菌,而传统的一步PCR法只能检测到3个淋球菌。 |
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