实验干货:一文读懂琼脂糖凝胶电泳实验 |
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琼脂糖凝胶电泳 什么是琼脂糖凝胶电泳? 琼脂糖凝胶电泳是一项通过核酸(如DNA)分子大小进行物质分离和识别的技术。举例说,将不同大小的DNA片段加载到由红藻提取的碳水化合物琼脂糖制成的多孔凝胶上。在电场的作用下,由于DNA带有负电荷的磷酸集团,片段将在凝胶中移动。较小的DNA片段移动较快,而较大的片段移动相对较慢。电泳结束后,比较DNA样品位置与一系列已知大小的DNA片段(称为DNA分子量标准样)的位置,可以获得准确的分子大小信息。 然而,对于RNA而言,由于其常形成二级结构,有时同一片段可能存在多个不同的种类,这使得其迁移方式复杂。因此,观察到的条带不总是准确反映它们的实际尺寸,导致图像模糊。 在这种情况下,琼脂糖天然凝胶通常不适用于RNA大小分析,尽管它们可以提供数量和完整性的估计。替代方法包括RNA印迹法和变性琼脂糖凝胶电泳,它们使用的条件可以破坏二级结构。 琼脂糖凝胶也可用于根据蛋白质的大小和电荷进行分离。与DNA/RNA不同,蛋白质的电荷取决于其含有的氨基酸类型。然而,由于琼脂糖凝胶的孔径较大,通常使用聚丙烯酰胺凝胶进行蛋白质分离,因其孔径较小,可提供更高分辨率,特别适用于小蛋白质分子。 工作原理: 琼脂糖,作为琼脂的成分之一,构成了一个立体的凝胶基质,由螺旋状的琼脂糖分子组成。这些螺旋状的分子通过氢键在超线圈束中紧密固定,形成通道和孔隙,使分子能够穿过。在加热的过程中,这些氢键断裂,导致琼脂糖从凝胶状态变为液体状态,使其可以在恢复形状前被倒入模具。 【图片1】琼脂糖凝胶中的孔隙形成和温度诱导的状态转变。 凝胶中琼脂糖的含量直接调控了孔隙的尺寸,进而影响了分子的可透过性和迁移速度。百分比较高的琼脂糖使孔径减小,因而只有较小的分子可以通过,其迁移速度也较慢。 在分子生物学实验室中,常使用0.7~1%的琼脂糖凝胶进行日常DNA分离。这种凝胶对0.2-10kb范围内的片段提供了明显而清晰的分辨率。较大的DNA片段可以采用较低百分比的凝胶,但会变得易碎难处理,而较高百分比的凝胶则能更好地分辨小片段,但可能凝固不均匀。 鉴于DNA在肉眼中无法直接观察,因此在凝胶凝固时会加入一种夹层染料,如溴化乙锭(EtBr),以渲染凝胶。该染料会与DNA结合,并在紫外线照射下发出荧光,使得DNA片段成为可见。DNA的存在越多,相应的条带就会越亮。 与加载染料混合的样本被放置在凝胶的一端,凝胶被浸泡在运行缓冲液中。然后电流通过凝胶槽两端的电极穿过凝胶。 【图片2】琼脂糖凝胶放置在缓冲液槽中,样品与加载染料混合后放置在凝胶一端的孔中,施加电流使带负电的DNA向正电极(阴极)移动 在样品充分分离后,将凝胶从槽中取出,置于紫外光箱上。夹层染料使得样品的条带可见,通过与已知大小的DNA标记进行比较,可以确定其尺寸。由于迁移距离和片段大小之间存在非线性关系,因此包含尺寸标记是至关重要的,可用作指导分析的依据。 A)图片左侧描述了DNA电泳的典型结果。在左边,有一个尺寸标记,用来作为样品DNA片段长度(以碱基对为单位)的参考。标记的右边是三个样品。图片显示了较小的DNA片段如何在琼脂糖凝胶中比较大的DNA片段移动得更远。B) 图片右侧的图表显示了DNA片段的大小与迁移距离之间的非线性关系。这是一条负的曲线,当DNA片段变大时,它们在凝胶中迁移的距离就会减少。 实验材料: DNA、琼脂糖、TBE电泳缓冲液、电泳载样缓冲液、溴化乙锭(EB)溶液母液、 DNAGreen、水平式电泳装置、电泳仪、台式高速离心机、恒温水浴锅、微量移液枪、微波炉或电炉、紫外透射仪、照相支架、照相机及其附件。 实验步骤: 一、试剂配制 1、5×TBE缓冲液:450 mmol/L Tris-硼 酸,10 mmol/L EDTA,pH值8.0。使用时将上述储存液稀释10倍至0.5×TBE缓冲液,可同时作为电泳及制胶用的缓冲液。 二、制胶 1、根椐制胶量及凝胶浓度,在加有一定量的电泳缓冲液的三角锥瓶中,加入准确称量的琼脂糖粉(总液体量不宜超过锥瓶的50%容量)。 2、在锥瓶的瓶口上盖上保鲜膜或牛皮纸,并在膜或纸上扎些小孔,然后在微波炉中加热溶解琼脂糖。加热时,当溶液沸腾后,请戴上防热手套,小心摇动锥瓶,使琼脂糖充分均匀溶解。此操作重复数次,直至琼脂糖完全溶解。 3、使溶液冷却至50℃-60℃左右,如需要可在此时加入溴化乙锭溶液(终浓度0.5 μg/ml)或按照1 μL / 30 mL的比例加入DNAgreen染料,并充分混匀。 4、将琼脂糖溶液倒入制胶模中,然后在适当位置处插上梳子。凝胶厚度一般在3~5 mm之间。制胶模如下图所示,小胶倒入25-30 mL左右琼脂糖溶液,大胶则60-70 mL左右,若需切胶回收,凝胶可适当加厚。 5、在室温下使胶凝固,大约30分钟~1小时。 三、上样 1、取适量样品与6×上样缓冲液混匀(如:1 μl样品与5 μl 6×上样缓冲液),用微量移液枪小心加入样品槽中。 2、上样量根据样品浓度可适当调整,若DNA含量偏低,则可依上述比例增加上样量,但总体积不可超过样品槽容量(一般小孔40 μl 为上限,大孔200 μl 为上限,具体和制胶膜规格相关)。 3、每加完一个样品要更换枪头,以防止互相污染,注意上样时要小心操作,避免损坏凝胶或将样品槽底部凝胶刺穿。 四、电泳 1、加完样后,合上电泳槽盖,立即接通电源。控制电压保持在110 V,电流在40 mA以上。 2、当条带移动到距凝胶前沿约2 cm时(约40 min),停止电泳。 3、紫外下拍照并观察。 注意事项: 1、5×TBE缓冲液放置时间过久会沉淀,因此一次性不要配太多。工作用电泳缓冲液为0.5×TBE缓冲液,取5×TBE缓冲液贮存液稀释,现配现用。 2、用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须统一。 3、琼脂糖粉在微波炉中加热时间不宜过长,每次当溶液起泡沸腾时停止加热,否则会引起溶液过热暴沸,造成琼脂糖凝胶浓度不准,也会损坏微波炉。溶解琼脂糖时,必须保证琼脂糖充分完全溶解,否则,会造成电泳图像模糊不清。 4、凝胶不立即使用时,请用保鲜膜将凝胶包好后在4℃下保存,一般可保存2~5天。 其他: 琼脂糖凝胶浓度与线形DNA的最佳分辨范围:
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