简化基因组的测序方法 |
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RAD-Seq(restriction site-associated DNA sequencing)最开始指的是2008年发表在PLOS ONE上“Rapid SNP discovery and genetic mapping using sequenced RAD markers"提出的方法，目前该文章的引用已经达到1200+，现在指代的是一系列基于限制性内切酶的测序技术。同样在概念上被引申的还有GBS(genotyping-by-sequencing),只不过GBS的名字不能让你直接把它和限制性内切酶联想起来.总之，如果现在公司给你推荐GBS或RAD-seq时，可能未必和你想的一样，你需要仔细问下他们的建库手段。毕竟手段不同，你的实验设计，操作和结果都会发生变化。这是RAD-seq相关方法的历年引用情况 不同RAD-seq技术引用情况RAD-seq虽说方法很多，但是文库构建流程大致如下，不同方法在其中某些步骤存在差异 起始基因组DNA量：能否允许降解FNA 限制性内切酶酶解：限制酶种类，数量 酶切位点结合接头：接头类型 酶解片段大小选择：直接选择，间接选择 添加barcode混池：视v接头而异 测序类型选择：单端，双端两者的差异在于，1）是现进行酶切然后随机破碎，最后仅选择存在酶切位点片段测序；2）也是酶切，但是后续直接选择合适大小的片段测序。 因此相对于1）测序的位点平均会少一点，也就会导致同一批样本后者利用率低于前者。无参考基因组更推荐前者，而不是后者。 不同方法的数据利用率 原始RAD-seqs最先提出的RAD-seq技术流程，也就是RAD-seq的冠名技术，分为如下几步： 基因组DNA用限制性内切酶裂解， 然后连接到P1接头。P1接头里含有正向扩增和Illumina测序引物位点，以及4~5 bp 的核酸barcode. barcode至少大于3 bp。 之后接头连接的片段(adapter-ligated fragments)混池，随机打断 DNA随后连接到P2接头，反向扩增扩展引物无法连接P2. P2是一种Y型接头，包含P2反向扩增引物位点的反向互补序列，使得不含P1接头的片段无法扩增。(Y型接头的工作原理) 最后仅有同时含P1和P2接头的片段能够上机测序。 RAD-seq protocol Genotyping-by-SequencingGBS比原始的RAD-seq步骤更加简单 将不同样本和含不同barcode接头成对放在平板里 使用ApeKI限制酶进行酶解 使用T4连接酶，将接头连接到片段两端因酶切产生的粘末端（stcky end） 将含不同barcode的样本混池，随后过片段长度筛选柱，过滤尚未反应的接头 加入PCR引物，进行PCR扩增这里没有直接对片段进行筛选，但是PCR扩增时优先扩增小片段 Genotyping-by-Sequencing流程 ddRAD-seqddRAD-seq和GBS相似，两者都不需要在加接头后进行随机打碎，GBS通过PCR扩增的方式过滤了大片段，而ddRAD-seq通过双酶切的方式，然后筛选固定长度来选择合适大小的片段 ddRAD-seq和RAD-seq的不同 常见方法的比较其实这些RAD-seq文库制备方法可以简单的分为两类： 1）对单酶切位点邻近片段测序，如最初的RAD-seq 2）对酶切位点两翼片段测序，如Genoytping-by-Sequencing下面是常见的物RAD-seq方法比较 方法 原始RAD 2bRAD GBS ddRAD ezRAD 控制位点的方法 选择限制酶 选择限制酶 选择限制酶 选择限制酶和片段大小选择阈值 选择限制酶和片段大小选择阈值 位点数/Mb 30～500 50～1000 5～40 0.3～200 10～800 位点长度 300bp 或1kb contig 33–36 bp < 300 bp < 300 bp |
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