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Native-PAGE(非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳)

已有 36674 次阅读 2009-6-12 15:15 |个人分类:生活点滴|系统分类:科研笔记| Native-PAGE

Native-PAGE

主要内容：1．Native-PAGE原理2．Native-PAGE实验方法3．Native-PAGE注意事项# ?* b a! w, a) v, O; x* p4．Native-PAGE和SDS-PAGE的比较5．Native-PAGE常见问题分析( _) d) Z5 B! o7 N1 m+

Native-PAGE原理

非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)是在不加入SDS 疏基乙醇等变性剂的条件下，对保持活性的蛋白质进行聚丙烯酰胺凝胶电泳，常用于同工酶的鉴定和提纯。未加SDS的天然聚丙烯酰胺凝胶电泳可以使生物大分子在电泳过程中保持其天然的形状和电荷，它们的分离是依据其电泳迁移率的不同和凝胶的分子筛作用，因而可以得到较高的分辨率，尤其是在电泳分离后仍能保持蛋白质和酶等生物大分子的生物活性，对于生物大分子的鉴定有重要意义，其方法是在凝胶上进行两份相同样品的电泳，电泳后将凝胶切成两半，一半用于活性染色，对某个特定的生物大分子进行鉴定，另一半用于所有样品的染色，以分析样品中各种生物大分子的种类和含量。

Native-PAGE实验方法

% O# `; x3 Z5 I# r7 l s! o8 }) @　　非变性聚丙烯酰胺凝胶和变性sds-page电泳在操作上基本上是相同的，只是非变性聚丙烯酰胺凝胶的配制和电泳缓冲液中不能含有变性剂如SDS等。一般蛋白进行非变性凝胶电泳要先分清是碱性还是酸性蛋白。分离碱性蛋白时候，要利用低pH凝胶系统，分离酸性蛋白时候，要利用高pH凝胶系统。酸性蛋白通常在非变性凝胶电泳中采用的pH是8.8的缓冲系统，蛋白会带负电荷，蛋白会相阳极移动；而碱性蛋白通常电泳是在微酸性环境下进行，蛋白带正电荷，这时候需要将阴极和阳极倒置才可以电泳2 @! `8 w* I, ]分离酸性蛋白工作液配制' G+ M- a' i4 f6 f! Z W1. 40%胶贮液(Acr:Bis=29：1）；- d ?) f L' Z. q2. 4×分离胶Buf(1.5 M Tris-HCl，pH 8.8)：18.2 g Trisbase 溶于80ml 水，用浓HCl调pH 8.8，加水定容到100ml，4℃ 贮存；; h, z/ M, ~7 X) Y$ S) c3. 4×堆积胶Buf(0.5 M Tris-HCl，pH 6.8)：6 g Trisbase 溶于80ml 水，用浓HCl调pH 6.8，加水定容到100ml，4℃ 贮存；/ @5 X2 U4 g' A6 N; p6 c0 U7 Q+ E4. 10×电泳Buf（pH8.8 Tris-Gly）:??30.3 g Trisbase， 144 g 甘氨酸，加水定容到1L，4℃ 贮存；) n% b6 l2 L; ^* S# U1 j, z5. 2×溴酚蓝上样Buf:1.25ml pH6.8, 0.5M Tris-Cl，3.0ml甘油，0.2ml 0.5% 溴酚蓝，5.5ml dH2O； -20℃贮存；6. 10％APS；+ d4 O6 O3 @; u# B! n/ r1 y% I# w7. 0.25％考马斯亮蓝染色液:Coomassie blue R-250 2.5g，甲醇450ml，HAc 100ml, dH2O 450ml；' m( e9 |; w3 {8 d7 j+ c8. 考马斯亮蓝脱色液: 100ml甲醇，100冰醋酸，800ml dH2O( K! m! E# W5 h9 ~" C5 z　　电泳胶的配制及电泳条件（上槽电极为负，下槽电极为正）" D, j& w. Z0 C; d' w1. 碱性非变性胶 17%分离胶(10 ml) 4%堆积胶(5 ml)2. 40%胶贮液(40%T,3.3%C） 4.25ml 0.5ml3. 4×分离胶Buf(1.5 M Tris-HCl，pH 8.8) 2.5ml4. 4×堆积胶Buf(0.5 M Tris-HCl，pH 6.8) 1.25ml5. 水 3.2ml" E: Q" 6. 10％APS ??35 μl7 k( q7. TEMED 15 μl/ V& S5 A$ x0 G4 `) z8. 10×电泳Buf（pH8.8 Tris-Gly）:100ml稀释到1L　电泳条件 :100V恒压约20min，指示剂进入浓缩胶；改换160V恒压，当指示剂移动到胶板底部时，停止电泳，整个过程约80min。$ , m p6 U' ^: }6 E( f: B; L　　染色和脱色:取出胶板于0.25％考马斯亮蓝染色液中染色约30min，倾出染色液，加入考马斯亮蓝脱色液，缓慢摇动，注意更换脱色液，直至胶板干净清晰背景。也可以用银染或者活性染色。. @; l( t5 m- F% W* f1 K分离碱性蛋白要用低pH凝胶系统，并使用以下缓冲液体系：' W/ m& }" h5 c% u5 v1. 分离胶：0.06M KOH，0.376M Ac，pH4.3（7.7% T，2.67% C）；2. 堆积胶：0.06M KOH，0.063M Ac，pH6.8（3.125% T，25% C）；3. 电泳缓冲液：0.14M 2-丙氨酸，0.35M Ac，pH4.5将正负电极倒置，用甲基绿（0.002%）为示踪剂+ s' c# R% }- y Z g　　实验操作同分离酸性蛋白。回收 3 ?6 ~- C2 b2 |* U8 N: W; { native-PAGE结束以后，采用电泳的方法进行回收，方法如下：. `' Q2 x! m! s# u, }' N 电泳结束以后，切取部分染色，然后根据染色结果切取含有蛋白质的胶带装入处理过的透析袋中，加入适量的缓冲液，最后把透析袋放入普通的核酸电泳槽中，并在电泳槽中加入适量的缓冲液（和透析袋中的缓冲液相同），低温电泳2-3小时即可。回收蛋白所用的缓冲液一般和电泳所用的缓冲液相同。

Native-PAGE注意事项

) G) ~/ z+ C# z! k7 L, I0 t1. 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的过程中，蛋白质的迁移率不仅和蛋白质的等电点有关，还和蛋白质的分子量以及分子形状有关，其中蛋白质的等电点是最重要的影响因子，要根据蛋白质的等电点来选择对应的电泳缓冲系统；% P: g) p: x8 B/ C; W7 q5 c2. 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的过程中，要注意电压过高引起发热而导致蛋白质变性，所以最好在电泳槽外面放置冰块以降低温度；# o* x* Q2 @0 Z8 I; u6 i% Y3. 蛋白质的分子量较大，则电泳时间可以适当延长，以使目的蛋白质有足够的迁移率和其它的蛋白质分开，反之亦然;) p* {* J0 p- ~9 x9 i+ l: a4. 变性样品的离子强度不能太高（I

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