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对于新手小白来说,免疫荧光染色堪称玄学,片子能不能染上,效果又如何,只能待到镜下检验。 今天丁香实验给大家整理了免疫荧光染色从「样本制备」到「问题分析」的全流程 protocol,建议转发收藏! 对此大师兄建议新手戳视频学习,原理、操作、常见问题分析统统掌握:点此查看操作视频
第一步 样本制作 以冰冻切片为例:首先将组织置于多聚甲醛固定过夜,30%蔗糖脱水后用包埋剂置于-20℃冷冻台上进行冰冻。 将冷冻好的组织块修平,按照不同的组织调整好预切厚度,脑组织一般贴片厚度为15-25um。切好的片子室温晾干后再进行后续染色处理。 点此查看冰冻切片实验 点此查看冰冻切片实验 点此查看冰冻切片实验 不同的样本预处理方法不同,关于细胞样本制备:贴壁细胞样本基本原理是使细胞生长在合适的固相支持物玻片上,然后进行固定。 细胞样本的制备 细胞样本的制备 细胞样本的制备
第二步 荧光染色 根据一抗是否直接带荧光标记,将免疫荧光染色分为直接染色或间接染色。 直接染色法是携带荧光素的抗体直接与标本内的抗原反应,形成抗原—荧光素标记抗体复合物,该法优点是较简单,特异性较高;缺点:应用范围较窄,敏感性也较低。 实际上在实验室中,我们最常使用的还是间接染色法,先用特异性抗体与细胞内相应抗原结合,再用荧光素标记的二抗与特异性抗体相结合,形成抗原-特异性抗体-标记荧光抗体的复合物。 下面大师兄就以间接染色法为例展开叙述: 实验步骤: 复温:取出制作好的样本(短期存放-20℃,长期存放-80℃保存),恢复至室温后,用1xPBS洗涤三次,每次 5 分钟; 抗原修复:用0.01M枸橼酸盐缓冲液(pH6.0)充分浸泡样本,微波炉中低火加热修复,保持微沸状态5 min效果最好; 破膜:用 0.5%Triton X-100( 1xPBS配制 )室温通透20 min(细胞膜上表达的抗原省略此步骤); 封闭:封闭液蛋白的选择原则是与一抗蛋白和目标蛋白种属不同,将非特异性位点结合掉,从而保证后续荧光染色的特异性。 一抗孵育:用抗体稀释液将一抗稀释成目标比例,4℃过夜。 一抗洗脱:第二天将湿盒拿出复温30 min,用1xPBS洗脱三次,每次5min; 荧光二抗:用抗体稀释液稀释荧光二抗,室温孵育2 h,注意避光; 二抗洗脱:用1xPBS洗脱三次,每次洗脱时间可稍长一些; 封片:用含防淬灭的甘油进行封片,按需可以对细胞核用DAPI进行染色; 拍片:晾干片子后,置于显微镜下观察,获取荧光图像。 |
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